Биологические особенности и вредоносность листостебельных болезней сои

Соя — перспективная высокобелковая культура, богатая жирами, углеводами и минеральными веществами. Ее используют более чем в 10 отраслях промышленности для производства свыше 400 видов продукции. Однако фактическая урожайность сои часто оказывается ниже потенциальной из-за поражения посевов бактериальными и грибными болезнями.

Вредоносность пятнистостей и биология пероноспороза сои

• Снижение урожая от бактериозов — 10,0–34,8 %
• Потери от грибных болезней — 15,0–20,0 %
• Потери при эпифитотии — до 50,0 %
• Урон от пероноспороза — 6,0–15,0 %
• Инкубация пероноспороза — 7 дней
• Инкубация церкоспороза — около 2 недель

К числу доминирующих во всем мире болезней грибной этиологии относят пероноспороз, мучнистую росу, аскохитоз, церкоспороз, септориоз, альтернариоз, антракноз, фузариозное увядание и склеротиниоз. По данным полевых испытаний, в посевах регулярно встречаются угловатый бактериоз, альтернариоз, церкоспороз и белая гниль. На семенном материале сои выявляются Fusarium oxysporum (Schlecht.) Snyd. et Hans., Stemphylium botryosum Wallr., Colletotrichum glycines Hori (C. truncatum (Schw.) Andrus et W.D. Moore), а также Alternaria alternata (Fr.) Keissl.

Впервые пероноспороз сои обнаружили в 1921 году в Маньчжурии (сейчас это часть территории Внутренней Монголии и Китая). Возбудителем заболевания является облигатный паразит Peronospora manshurica (Naumov) Syd из семейства Peronosporaceae. Фитопатоген способен поражать сою на всех стадиях ее вегетации, вызывая преждевременное осыпание листьев.

На листьях болезнь проявляется в виде бледно-зеленых, а затем желтеющих пятен, ткань которых со временем буреет и может разрываться с нижней стороны. Во влажную погоду и в периоды частых рос на этих участках образуется серо-фиолетовый войлочный налет спороношения. При диффузной форме поражения все листья и черешки покрываются сплошным налетом, растения отстают в росте и часто не завязывают бобов. При локальной форме налет развивается внутри створок бобов, а семена покрываются плотным желтовато-серым мучнистым налетом.

Первичной инфекцией служат покоящиеся ооспоры на растительных остатках и семенах. Вторичное заражение происходит с помощью зооспор, которые разносятся ветром и дождем. Инкубационный период болезни составляет 7 дней.

География регистрации пероноспороза обширна:

• Австралия и Океания: Бермуды, Новая Зеландия, Австралия.
• Азия: Китай, Индия, Иран, Израиль, Казахстан, КНДР (Корейская Народно-Демократическая Республика), Южная Корея, Турция, Индонезия, Малайзия, Филиппины, Тайвань, Таиланд, Вьетнам, Япония.
• Европа: Хорватия, Чехословакия (бывшая), Чехия, Дания, Франция, Германия, Венгрия, Италия, Латвия, Молдова, Польша, Румыния, Россия, Сербия, Швеция, Украина, Великобритания.
• Америка: Соединенные Штаты Америки, Канада, Мексика, Бразилия, Колумбия.
• Африка: Эфиопия, Южная Африка, Зимбабве.

Показатель вредоносности болезней сои	Диапазон снижения урожайности, %
Бактериозы (в ключевых странах возделывания)	10,0–34,8
Грибные болезни (обычный недобор урожая)	15,0–20,0
Грибные болезни (при эпифитотийном развитии)	до 50,0
Пероноспороз сои (оомицетное поражение)	6,0–15,0

Церкоспороз сои: география и особенности развития

Впервые церкоспороз сои был обнаружен в Японии в 1915 году, а сегодня он распространен повсеместно в зонах выращивания культуры. Болезнь вызывает микромицет Cercospora sojina Hara из семейства Mycosphaerellaceae. Поражение растений может происходить на любой стадии вегетации, но чаще всего начинается в репродуктивную фазу. Патоген поражает стебли, листья, бобы и семена сои, а его инкубационный период составляет около 2 недель.

Заболевание зарегистрировано в следующих регионах:

• Австралия и Океания: Тонга.
• Азия: Индия, Китай, Южная Корея, Непал, Тайвань, Япония.
• Европа: Австрия, Бельгия, Болгария, Венгрия, Германия, Греция, Дания, Ирландия, Испания, Италия, Кипр, Латвия, Литва, Люксембург, Мальта, Нидерланды, Польша, Португалия, Россия, Румыния, Словакия, Словения, Финляндия, Франция, Хорватия, Чешская Республика, Швеция, Эстония.
• Америка: Аргентина, Бразилия, Венесуэла, Канада, Куба, Мексика, Соединенные Штаты.
• Африка: Замбия, Камерун.

Церкоспороз и септориоз сои: симптомы, риски и динамика заражения

При развитии церкоспороза важно вовремя идентифицировать его проявления на всех органах растения. На листьях болезнь образует округлые или угловатые водянистые пятна диаметром от 1 до 5 миллиметров. Со временем они темнеют, приобретая окраску от коричневой до серой с тонкой красновато-коричневой каймой, светлеют в центре, но остаются темными с нижней стороны листа. При влажной погоде на нижней стороне листовой пластины начинается активное спороношение возбудителя.

На более поздних стадиях вегетации церкоспороз переходит на стебли, бобы и семена сои. Это напрямую угрожает качеству будущего урожая и семенного материала. Симптомы поражения распределяются следующим образом:

• На стеблях: вытянутые фиолетово-красные пятна, которые со временем темнеют, приобретая сероватый центр и коричневый ободок.
• На бобах: слегка вдавленные округлые или удлиненные красно-коричневые пятна, перерастающие в коричневые или светло-серые с узкими темно-коричневыми краями. Через стенки боба гриб проникает к семенам.
• На семенах: выпуклые поверхностные пятна неправильной округлой формы с резким коричневым ободком (по 1–2 пятна на семя, иногда больше), вызывающие растрескивание и отслоение оболочки.

Инфекция сохраняется в виде мицелия в семенах и растительных остатках. В период вегетации конидии переносятся ветром и дождем, вызывая новые циклы заражения. Во влажную погоду гриб начинает активно спороносить преимущественно с нижней стороны листьев.

Септориоз сои вызывает микромицет Septoria glycines Hemmi (семейство Mycosphaerellaceae). Заболевание впервые обнаружили в Японии в 1915 году, сегодня оно распространено повсеместно. Патоген регистрируют в Азии (Индия, Китай, КНДР, Южная Корея, Непал, Тайвань, Япония), Европе (Болгария, Германия, Италия, Россия, Румыния, Сербия), Америке (Боливия, Бразилия, Канада, Колумбия, Соединенные Штаты Америки) и Африке (Зимбабве).

Инфекция начинает распространяться с нижнего яруса растений, проникая через устьица и постепенно поднимаясь вверх по стеблю. В сухую погоду развитие болезни полностью прекращается. Источником заражения служат растительные остатки и семена, где гриб сохраняется мицелием и пикнидами.

• Фаза начала заражения септориозом — BBCH 12–13 (настоящий лист на 2–3-м узле распущен)
• Инкубационный период — от 7 до 10 дней
• Диапазон температур для развития — от 15 до 30 °C
• Оптимальная температура — +26...+28 °C

Характерный симптом септориоза — угловатые или округлые пятна от красного до коричневого цвета, окруженные хлорозной каймой. Со временем они сливаются в крупные некротические участки неправильной формы. Через некоторое время на этих пятнах появляются мелкие черные точки — пикниды.

Мучнистая роса сои: биология возбудителя и вредоносность

Возбудителем заболевания является облигатный паразит Erysiphe diffusa (Cooke & Peck) U. Braun & S. Takam (семейство Erysiphaceae). Впервые мучнистая роса сои была описана в 1931 году. Ранее появлялись сообщения о грибе Erysiphe polygoni DC как о многоядном патогене на сое Soja maxima (L.) Piper, но они не были подтверждены научными данными. Сегодня болезнь регистрируют в Азии (Вьетнам, Индия, Южная Корея, Япония), Европе (Россия) и Америке (Бразилия, Канада, Соединенные Штаты).

Симптомы проявляются на верхней стороне листьев в виде небольших участков белого экзогенного мицелия. Пятна быстро разрастаются и сливаются, закрывая всю листовую пластину. При высокой влажности воздуха гриб поражает и другие надземные органы растения. Патоген зимует на растительных остатках в виде клейстотециев: весной аскоспоры разносятся ветром и дождем для первичного заражения, а летом конидии обеспечивают вторичные волны инфекции.

Влияние листостебельных болезней на урожайность и качество сои представлено в таблице ниже.

Заболевание	Оптимальные условия для развития	Потери урожая, %	Влияние на растение и качество семян
Церкоспороз	Температура +25...+30 °C, относительная влажность воздуха 90,0 %	От 10,0 до 60,0 %	Сокращение ассимиляционного аппарата, преждевременный сброс листьев. Снижение содержания жира в семенах на 2,1–6,9 %, протеина — на 4,0–5,0 %.
Септориоз	Температура +26...+28 °C, относительная влажность воздуха 90,0 %	До 27,0 %	Опадение листьев происходит на 25–40 дней раньше физиологического срока.
Мучнистая роса	Температура 18–24 °C, высокая влажность воздуха	До 60,0 % (у восприимчивых сортов)	Снижение фотосинтетической активности листового аппарата до 50,0 %.

Антракноз сои: скрытая угроза репродуктивной фазы

Антракноз сои был впервые описан в Корее в 1917 году. Сейчас заболевание имеет комплексную этиологию: на культуре зарегистрирован целый ряд микромицетов рода Colletotrichum (семейство Glomerellaceae). К ним относятся Colletotrichum destructivum O’Gara, Colletotrichum coccodes (Wallr.) S. Hughes, Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc., Colletotrichum incanum H.-C. Yang, J.S. Haudenshield & G.L. Hartman, Colletotrichum plurivorum Damm, Alizadeh & Toy. Sato, Colletotrichum sojae Damm & Alizadeh, Colletotrichum musicola Damm, Colletotrichum brevisporum Phouliv., Noireung, L. Cai & K.D. Hyde и другие патогены, ранее относившиеся к Colletotrichum truncatum (Schwein.) Andrus & W.D. Moore. География болезни охватывает Австралию и Океанию (Австралия, Папуа-Новая Гвинея, Тонга, Фиджи), Азию (Бруней-Даруссалам, Индия, Иран, Камбоджа, Китай, Южная Корея, Малайзия, Мьянма, Непал, Пакистан, Тайвань, Таиланд, Япония), Европу (Дания, Испания, Италия, Россия, Румыния, Сербия, Черногория), Америку (Аргентина, Бразилия, Канада, Колумбия, Куба, Соединенные Штаты) и Африку (Сенегал, Южная Африка).

На всходах болезнь проявляется в виде бурых вдавленных язв со светлым центром, что в дальнейшем может привести к их гибели. Основные симптомы развиваются в репродуктивной фазе: на листьях проступает характерный рисунок на абаксиальных жилках, а на стеблях и бобах образуются темные вдавленные пятна неправильной формы с ацервулами и темными щетинками. Зараженные бобы скручиваются и абортируются, что ведет к прямым потерям урожая. Развитию заболевания способствуют температура воздуха выше 25 °C и сохранение влаги на листьях в течение 24 часов.

Страна	Потери урожая от антракноза, %
Бразилия, Индия	до 100
Таиланд	30,0–50,0
Соединенные Штаты	16,0–26,0

Альтернариоз и фузариоз: пятнистости листьев и сосудистое увядание

Альтернариоз сои вызывают грибы рода Alternaria из семейства Pleosporaceae — преимущественно Alternaria alternata (Fr.) Keissl и Alternaria tenuissima (Kunze) Wiltshire. Этот фитопатогенный комплекс распространен в Австралии, Азии (Индия, Китай, Пакистан, Тайвань, Таиланд, Турция), Европе (Польша, Россия, Украина), Америке (Бразилия, Венесуэла, Куба, Мексика, Никарагуа, Соединенные Штаты) и Африке (Кения, Малави, Эфиопия, Южная Африка). Болезнь поражает почти все органы растения, вызывая некроз листьев, черешков и стеблей. Она ведет к недобору урожая из-за уменьшения фотосинтезирующей площади и снижает всхожесть семян.

Симптомы проявляются в виде мелких коричневых округлых или угловатых пятен, которые затем светлеют, приобретают темно-коричневый ободок или концентрические кольца с четкой границей. Пятна разрастаются, сливаются и образуют крупные мертвые зоны, из-за чего листья засыхают и опадают. Во влажных условиях на пораженных тканях появляется оливковый или черный сажистый налет спороношения. Инфицированные семена становятся сморщенными, меняют окраску на зеленую или коричневую, а при сильном заражении полностью теряют способность прорастать.

• Оптимальная температура развития — +20...+27 °C
• Необходимый период капельной влаги — 3–4 часа
• Инкубационный период болезни — от 2 до 12 дней

Источниками первичной инфекции служат семена и растительные остатки, а вторичное заражение в период вегетации происходит с помощью конидий. Патогены зимуют на сорных растениях и растительных остатках в форме мицелия и конидий. В семенах грибы могут сохраняться внутри в виде мицелия, но чаще конидии находятся только на поверхности семенной кожуры.

Фузариозное увядание (также называемое трахеомикозным увяданием и синдромом внезапной смерти) впервые зарегистрировали в США в 1970 году. Заболевание вызывают грибы семейства Nectriaceae из родов Neocosmospora и Fusarium, преимущественно Neocosmospora solani (Mart.) (синоним Fusarium solani (Mart.) Sacc.), Fusarium oxysporum Schltdl, Fusarium equiseti (Corda) Sacc и др. Оно распространено повсеместно: в Австралии, Азии (Бруней-Даруссалам, Индия, Китай, Южная Корея, Тайвань, Таиланд, Япония), Европе (Болгария, Польша, Россия, Румыния, Хорватия), Америке (Канада, Аргентина, Бразилия, Куба, Мексика, Никарагуа, Пуэрто-Рико, Соединенные Штаты) и Африке (Боливия, Гана, Зимбабве, Танзания, Эфиопия, Южная Африка).

Фузариозное увядание и аскохитоз: риски и диагностика

Фузариозное увядание сои (трахеомикоз) начинает активно проявляться с периода цветения. Возбудители проникают в растение через апикальные области молодых корней или механические повреждения. Грибной мицелий разрастается внутри сосудов ксилемы и переходит на прилегающие паренхимные ткани. В результате у растений нарушается снабжение водой и питательными веществами, из-за чего листья теряют тургор, желтеют, а затем усыхает и все растение.

Для точной диагностики фузариоза в полевых условиях обратите внимание на следующие признаки:

• На поперечном срезе корня и стебля отчетливо видно побурение проводящих сосудов.
• Внутреннее побурение сосудов может распространяться вверх по стеблю на 15–20 см, даже если снаружи видны лишь небольшие темные пятна.
• Пораженные растения постепенно желтеют и не формируют бобов. Болезнь также провоцирует опадение цветков и завязей.
• В конце вегетации на бобах появляются пятна и язвы. Во влажную погоду створки обесцвечиваются и покрываются спородохиями.

Развитию трахеомикозного увядания способствуют засушливые и теплые годы с гидротермическим коэффициентом (ГТК) менее 1,0. Минимальная температура для прорастания спор патогена составляет 4 °C, а оптимальный рост мицелия происходит при температуре +20…+25 °C. Общие потери урожая от заболевания варьируют от 20,0 до 80,0 %.

Показатель структуры урожая сои	Снижение при максимальном поражении фузариозом, %
Число бобов на растении	62,0
Число семян	86,2
Масса семян с одного растения	70,3
Масса 1000 семян	16,3

Аскохитоз сои вызывают грибы семейства Pleosporaсeae и Didymellaceae. Основным возбудителем считается Phoma sojicola (Abramov) Kövics, Gruyter & Aa, однако сходные симптомы вызывают Didymella pinodella (L.K. Jones) Qian Chen & L. Cai, Phoma exigua var. exigua, Didymella heteroderae (Sen Y. Chen, D.W. Dicks. & Kimbr.) Qian Chen & L. Cai и Didymella subglomerata Boerema, Gruyter & Noordel. Болезнь широко распространена в мире и фиксируется в России, странах Европы (Германия, Польша, Венгрия), Азии (Бруней-Даруссалам, Индия, Китай, Тайвань), Америки (Бразилия), Австралии и Океании (Фиджи), а также в Африке (Зимбабве, Руанда, Танзания, Эфиопия).

Симптомы аскохитоза можно обнаружить в течение всего вегетационного периода:

• На семядолях проступают темно-бурые пятна с почти черным ободком.
• На листьях образуются крупные пятна с темно-бурой каймой и светлым центром, где позже формируются черные точки — пикниды. Со временем некротизированный центр пятна выпадает.
• На молодых стеблях проступают бурые полосы, приводящие к растрескиванию и разрушению тканей. На более старых растениях пятнистость становится продолговатой и темной.
• Пораженные семена становятся более светлыми, щуплыми, морщинистыми и покрываются пикнидами.

За сезон патоген успевает дать несколько генераций. Недобор урожая при развитии аскохитоза составляет от 15,0 до 20,0 %.

Белая гниль (склеротиниоз): условия вспышки и вредоносность

Возбудителем белой гнили является микромицет Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary (семейство Sclerotiniaceae, род Sclerotinia). Впервые разрушительный характер этой болезни с колоссальными потерями урожая зафиксировали в 1948 году в США. Сейчас заболевание регистрируют во всех ключевых соесеющих регионах мира: от России, Болгарии и Румынии до Бразилии, США, Китая, Австралии и Южной Африки.

На листьях склеротиниоз проявляется побурением и отмиранием тканей. Участки стебля вокруг очага инфекции обесцвечиваются. При влажной погоде на стеблях нарастает белый ватообразный мицелий, на котором и внутри которого формируются крупные склероции (сначала желто-серые, затем темнеют до черных). В сухую погоду налет не образуется — стебли просто белеют, становятся трухлявыми, и растение гибнет.

Инфицирование растений происходит преимущественно через опавшие лепестки цветков, которые служат для гриба питательным субстратом. Заражение через раны или при прямом контакте здорового растения с больным происходит значительно реже. Вредоносность белой гнили носит спорадический характер: в зависимости от погоды потери урожая могут достигать 70,0 %, а масса 1000 семян снижается на 18,8–38,6 %.

• Жизнеспособность склероциев в почве — до 5 лет
• Температура для прорастания склероциев — 4–16 °C
• Влажность почвы для развития апотециев — 75,0–80,0 %
• Глубина залегания склероциев для прорастания — до 5 см

Для предотвращения серьезных потерь урожая от комплекса этих болезней агроному необходимо внедрять систему интегрированной защиты сои. Она должна сочетать как своевременные предупредительные меры, так и эффективные истребительные обработки фунгицидами.

Предупредительные мероприятия состоят из: соблюдения севооборота, выбора устойчивых сортов, сроков сева, Глубина заделки семян">глубины заделки семян и нормы высева, применения удобрений. Данные аспекты возделывания влияют на общую устойчивость культуры к патогенам.

Пространственное и временное размещение культуры. Лучшими предшественниками для сои являются озимые и яровые зерновые культуры, худшими – подсолнечник, рапс и бобовые культуры из-за общих фитопатогенов. Между посевами должна соблюдаться пространственная изоляция не менее одного километра для недопущения распространения болезней на близлежащие посевы сои. При возделывании сои на одном и том же месте А. А. Мауи отмечал увеличение количества пораженных растений белой гнилью. Так, в первый год оно составляло 7,7 %, на второй и третий – 17,3 и 33,0 % соответственно. При бессменном посеве сои в течение 2-х лет увеличивалась интенсивность поражения почвенными патогенами с 1,0–9,5 % до 21,0–35,0 %, потери урожая при этом составляли 11,6 %, на 3 год приводили к потере 19,2 %, а в течение 4 лет – 65,4 % урожая.

Выбор сорта является одним из важнейших аспектов интегрированной защиты культуры от фитопатогенов, так как позволяет не только увеличить урожайность, но и снизить развитие болезней за счет подбора сорта.

На данный момент в перечне зарегистрированных сортов сельскохозяйственных растений имеются следующие сорта с различной устойчивостью к пероноспорозу: Акардия, Аурелина, Адесса, а также один слабовосприимчивый сорт к склеротиниозу – Добрыня.

Посев не в оптимальные сроки приводит к снижению устойчивости растений на ранних стадиях развития, вследствие чего всходы сильнее поражаются фитопатогенами. Так, в исследовании В. И. Заостровных сообщалось, что при ранних сроках сева развитие фузариоза, аскохитоза и септориоза увеличивалось в 4–5 раз по сравнению с более поздними сроками сева. Пораженность растений белой гнилью в исследованиях А. А. Мауи в результате раннего сева достигала до 27,0–33,0 %, а при оптимальном – снижалась в 1,7 раза. Глубокий посев семян, ухудшающий условия прорастания, удлиняющий гипокотиль проростков и время выхода их на поверхность почвы, упрощает инфицирование почвенными микромицетами. По данным Ч. Цзюмей, поражение растений увеличивалось с 19,0–30,0 % при посеве на глубину 3 см и до 46,0–51,0 % при посеве семян на глубину 4–7 см.

В исследовании В. И. Заостровных сообщалось об отсутствии четкой зависимости между нормой высева, шириной междурядья и развитием болезней, но имелась тенденция к увеличению развития с повышением нормы высева. При максимальной норме высева развитие болезней резко возрастало.

Удобрения, вносимые под сою, положительно влияют на устойчивость культуры к почвенным патогенам. Как правило, внесение фосфорных удобрений при посеве семян снижает интенсивность болезни, внесение азота – повышает.

Г. О. Жернов в своем исследовании сообщал о снижении развития почвенных фитопатогенов при увеличении нормы внесения NPK. Таким образом, развитие фузариоза снижалось на 6,9–10,2 % в зависимости от стадии развития.

В настоящее время среди истребительных мероприятий наиболее широко используется химический метод защиты, включающий протравливание семян и обработки фунгицидами в период вегетации.

Поскольку одним из основных источников инфекции болезней сои являются семена и почва, протравливание позволяет существенно снизить инфицированность семенного материала и обеспечивает защиту проростков на ранних этапах роста и развития. В настоящее время для предпосевной обработки семян сои в Беларуси зарегистрированы три препарата: Скарлет, МЭ (тебуконазол, 60 г/л + имазалил, 100 г/л); Тирада, СК (тирам, 400 г/л + дифеноконазол, 30 г/л); Систива, КС (флуксапироксад, 333 г/л).

Учитывая, что любой протравитель обеспечивает защиту в течение начального периода роста растений, в период вегетации для защиты от болезней требуются обработки фунгицидами. Для обеспечения высокой биологической, хозяйственной и экономической эффективности фунгициды необходимо применять с учетом биологических особенностей возбудителей болезней, т. е. на основании порога вредоносности. Для условий нашей страны такие исследования до настоящего времени не проводились. Ассортимент препаратов, разрешенных для применения, весьма ограничен и включает 5 фунгицидов: Харвига, КЭ (пираклостробин, 150 г/л + флуксапироксад, 75 г/л); Пропульс, СЭ (флуопирам, 125 г/л + протиоконазол, 125 г/л); Титул Дуо, ККР (пропиконазол, 200 г/л + тебуконазол, 200 г/л), Эвклид, СК (азоксистробин, 250 г/л + боскалид, 150 г/л), Амистар Голд, СК (азоксистробин, 125 г/л + дифеноконазол, 125 г/л).

Заключение. Таким образом, приведенный в работе анализ литературных данных свидетельствует о широком распространении, и высокой вредоносности болезней сои грибной этиологии. Структура доминирования патогенов, паразитирующих на сое, существенно зависит от региона возделывания культуры и гидротермических условий, складывающихся в вегетационном сезоне. В Беларуси исследования биоразнообразия грибов-возбудителей болезней сои носят в основном отрывочный характер. Поэтому являются актуальными исследования по уточнению видового состава возбудителей болезней сои и их вредоносности в условиях Беларуси, биологическое обоснование сроков применения фунгицидов для защиты посевов, а также формирование ассортимента высокоэффективных препаратов.

Гофман, А. В. Особенности развития болезней на различных сортах сои и применение средств защиты в условиях орошения в зоне неустойчивого увлажнения ставропольского края: автореф. дис.... канд. биол. наук: 06.01.11 / А. В. Гофман; Ставропольский гос. аграр. ун-т. – Краснодар, 2007. – 23 с.

Дега, Л. А. Болезни и вредители сои на Дальнем Востоке / Л. А. Дега; под ред. А. П. Ващенко; Рос. акад. с.-х. наук, Дальневост. регион. науч. центр, Примор. науч.-исслед. ин-т сел. хоз-ва. – Владивосток: Дальнаука, 2012. – 97 с.

Жернов, Г. О. Защита сои от болезней в условиях Курганской области: автореф. дис.... кандидата с.-х. наук: 06.01.07 / Г. О. Жернов; Курганская гос. с.-х. акад. им. Т. Е. Мальцева. – Новосибирск, 2016. – 19 с.

Заостровных, В. И. Влияние некоторых агротехнических приемов на фитосанитарную ситуацию посевов сои / В. И. Заостровных // Сибир. вестн. с.-х. науки. –

2005. – № 5. – С. 62–69.

Заостровных, В. И. Вредные организмы сои и система фитосанитарной оптимизации ее посевов = Soya pests and phytosanitary optimizing of it’s cultivation: монография / В. И. Заостровных, Л. К. Дубовицкая; под ред. В. А. Чулкиной; Рос. акад. естеств. наук, Зап.-Сиб. отд-ние, Кемер. гос. с.-х. ин-т, Дальневост. гос. аграр. ун-т. – Новосибирск: [б. и.], 2003. – 528 с.

Зараженнность семян сои фитопатогенными грибами в условиях ее адаптации в лесостепи западной Сибири / Н. М. Коняева [и др.] // Вестн. НГАУ. – 2016. – № 1. – С. 22–28.

Иванцова, Е. А. Болезни сои / Е. А. Иванцова // Волгоград. фермер. – 2016. – № 3. – С. 62–65.

Казанцева, Е. В. Распространенность болезней сои в северной лесостепи Приобья / Е. В. Казанцева, Л. Ф. Ашмарина // Вестн. НГАУ. – 2014. – № 3. – С. 27–31.

Крылова, Т. С. Совершенствование системы защиты сои в условиях амурской области: дис.... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Т. С. Крылова; Рос. гос. аграр.ун-т – МСХА им. К. А. Тимирязева. – М., 2021. – 139 л.

Максимович, Я. В. Фитосанитарная ситуация агроценозов сои в разных агроклиматических условиях / Я. В. Максимович, М. Г. Немкевич // Современные технологии с.-х. производства: сб. науч. ст. по материалам XX Междунар. науч.-практ. конф. (Гродно, 26 мая, 24 марта, 21 марта 2017 г.): технология хранения и переработки с.-х. продукции, агрономия, защита растений / М-во сел. хоз-ва и продовольствия Респ. Беларусь, Гродн. гос. аграр. ун-т; ред.: О. В. Вертинская. – Гродно, 2017. – С. 204–209.

Мауи, А. А. Патогены сои в условиях юго-востока Казахстана / А. А. Мауи, Б. Н. Сауранбаев, К. И. Оразбаев // J. of Social, Humanities and Administrative Sciences. – 2017. – Vol. 3 (5). – P. 20–26.

Оценка биологической эффективности препарата фитодок Planteco® против аскохитоза сои в Алматинской области / И. И. Темрешев [и др.] // Инноватика в современном мире: опыт, проблемы и перспективы развития: сб. науч. ст. по материалам III Междунар. науч.-практ. конф., Уфа, 18 августа 2020 года / Редкол.: И. А. Соловьев [и др.]. – Уфа,

2020. – С. 53–61.

Петибская, В. С. Соя: химический состав и использование / В. С. Петибская; под ред. В. М. Лукомца; Гос. науч. учреждение Всерос. науч.-исслед. ин-т масличных культур им. В. С. Пустовойта Рос. акад. с.-х. наук. – Майкоп: Полиграф-ЮГ, 2012. – 432 с.

Станчева, Й. Атлас болезней сельскохозяйственных культур: в 5 т. / Й. Станчева; пер. с болгар. Г. Даниловой; ред.: А. С. Васютин, Л. В. Ширина, О. А. Кулич. – М.: Пенсофт, 2003. – Т. 3: Болезни полевых культур. – 175 с.

Цзюймей, Ч. Биолого-токсикологическое обоснование использования химических средств для защиты сои от корневой гнили: автореф. дис.... кандидата биол. наук:

06.01.11 / Ч. Цзюймей; Всерос. науч.-исслед. ин-т защиты растений. – Спб., 1998. – 24 с.

33. Alternaria alternata [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/900. – Date of access:

34. Alternaria tenuissima [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/1099. – Date of access:

36. Biology, Yield loss and Control of Sclerotinia Stem Rot of Soybean / J. P. Angelique [et al.] // J. of Integrated Pest Management. – 2012. – Vol. 3, iss. 2. – P. 1–7.

37. Cercospora sojina [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/112959. – Date of access:

38. Colletotrichum brevisporum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/481576. – Date of access:

39. Colletotrichum coccodes [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/5911. – Date of access:

40. Colletotrichum destructivum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/5967. – Date of access:

41. Colletotrichum gloeosporioides [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/5976. – Date of access:

42. Colletotrichum incanum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/510514. – Date of access:

43. Colletotrichum musicola [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/564242. – Date of access:

44. Colletotrichum plurivorum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/564245. – Date of access:

45. Colletotrichum sojae [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/564246. – Date of access:

46. Colletotrichum truncatum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/6068. – Date of access:

51. Didymella heteroderae [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/545496. – Date of access:

52. Didymella pinodella [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/545505. – Date of access:

53. Didymella subglomerata [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/545511. – Date of access:

54. Pederson, V. D. Downy mildew of soybeans: a dissertation [Electronic resource] / V. D. Pederson. – Iowa State University of science and Technology ames, Iowa, 1961. – Mode of access: https://dr.lib.iastate.edu/server/api/core/bitstreams/0a6d2642-d72c-4615-87ac006e33f0a855/content – Date of access: 24.01.2024.

58. Erysiphe diffusa [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/150030. – Date of access:

59. Evaluating Cercospora leaf blight resistance in soybean accessions using an improved categorical disease-evaluation scale / B. M. Ward [et al.] // J. of Crop Improvement. – 2021. – Vol. 35, iss. 11. – P. 1–21.

60. Express-PRA zu Cercospora sojina – Forschung und Züchtung [Electronic resource] // EPPO Platform on PRAs. – Mode of access: https://pra.eppo.int/pra/68e36f50-5dc0-405c-b7d90b1ed624a120. – Date of access: 24.01.2024.

62. Fungal Databases – Fungus-Host By Country [Electronic resource]. – Mode of access: https://fungi.ars.usda.gov/. – Date of access: 24.01.2024.

63. Fusarium equiseti [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/10631. – Date of access:

64. Fusarium oxysporum [Electronic resource] // MYCOBANK Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/10756. – Date of access:

65. Hartman, G. L. Compendium of Soybean Diseases / G. L. Hartman, J. B. Sinclair, J. C. Rupe. – 4th edition. – APS Press: St. Paul, 1999. – 100 s.

66. Hershman, D. E. Downy Mildew of Soybeans [Electronic resource] / D. E. Hershman // Plant Pathology Fact Sheet / Cooperative extension service; University of Kentucky, College of Agriculture. – Mode of access: http://plantpathology.ca.uky.edu/files/ppfs-ag-s-03.pdf. – Date of access: 24.01.2024.

67. Hissek, K. First report of Phoma sojicola (syn. Ascochyta sojicola) on Glycine max in Austria / K. Hissek, G. Bedlan // J. für Kulturpflanzen. – 2016. – Vol. 68, iss. 3. – P. 72–74.

69. Identification of Fusarium species associated with soybean root rot in Sichuan Province / X. L. Chang [et al.] // European J. of Plant Pathology. – 2018. – Vol. 151. – P. 563–577.

74. Kosvics, G. J. Phoma sojicola comb. nov. and other hyaline-spored coelomycetes pathogenic on soybean / G. Kosvics, J. de Gruyter, Аа H. A. Van Der // Mycol. Res. – 1999. – Vol. 103, iss. 8. – P. 1065–1070.

78. Meier, U. Growth stages of mono-and dicotyledonous plants: BBCH Monograph / U. Meier; Ed. by U. Meier. – 2 Edition. – Berlin an Braunschweig: ВВА, 2001. – 158 р.

79. Missouri. Soybean Disease Field Guide [Electronic resource] / ed. K. Bissonnette. – Missouri: University of Missouri, [w. y.]. – 64 pp. – Mode of access: https://mosoy.org/wp-content/ uploads/2021/03/59934-21-MO-Disease-Guide.pdf. – Date of access: 24.01.2024.

86. – Mode of access: https://sea.ufr.edu.br/SEA/article/view/1131 – Date of access: 24.01.2024.

81. Mycobank Database [Electronic resource]. – Mode of access: https://www.mycobank. org/. – Date of access: 24.01.2024.

82. Neocosmospora solani [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/542273. – Date of access:

83. Paxton, J. D. Powdery Mildew of Soybeans / J. D. Paxton, D. P. Rogers // Mycologia. –

1974. – Vol. 66, iss. 5. – P. 894–896.

84. Peronospora manshurica [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/145334. – Date of access:

85. Peronospora manshurica [Electronic resource] // EPPO Global Database. – Mode of access: https://gd.eppo.int/taxon/PEROMA/distribution. – Date of access: 24.01.2024.

86. Phoma exigua var. exigua [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/21021. – Date of access:

87. Phoma sojicola [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https:// www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/50121. – Date of access: 24.01.2024.

88. Phoma-like fungi on soybeans / G. J. Kosvics [et al.] // Crit. Rev. Microbiol. – 2014. – Vol. 40, iss. 1. – P. 49–62.

89. Saharan, G. S. Sclerotinia diseases of crop plants: biology, ecology and disease management / G. S. Saharan, N. Mehta. – Netherlands: Springer Dordrecht, 2008. – 486 s.

90. Sclerotinia sclerotiorum [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https://www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/24988. – Date of access:

92. Septoria glycines [Electronic resource] // Mycobank Database. – Mode of access: https:// www.mycobank.org/page/Name %20details %20page/25453. – Date of access: 24.01.2024.

93. Septoria glycines [Electronic resource] // EPPO Global Database. – Mode of access: https://gd.eppo.int/taxon/SEPTGL/distribution. – Date of access: 24.01.2024.

94. Singh, G. Distribution, Importance and Diseases of Soybean and Common Bean: A Review / G. Singh, G. Dukariya, A. Kumar // Biotechnology J. International. – 2020. – Vol. 24, iss. 6. – P. 86–98.

96. Sweet, L. Soybean diseases / L. Sweet, A. Wrather, S. Wright; Integrated Pest Management; ed. D. Murphy. – Columbia: University of Missouri Extension, 2008. – 28 p.

E. O. Senkovsky, N. A. Krupenko RUE «Institute of Plant Protection», Priluki, Minsk region

MAIN LEAF DISEASES OF SOYBEAN, THEIR

BIOLOGICAL FEATURES OF DEVELOPMENT AND

Annotation. Soybean is a valuable forage and oil crop all over the world. One of these factors limiting the high growth of the crop are diseases arising among the lesions of fungi and fungus-like organisms, belong to the category of the most developed and economically significant. The expansion of soybean acreage in Belarus and the insufficient study of the species composition of pathogens of fungal etiology determine the relevance of the analysis of domestic and foreign literature to consider the issue. The article provides data on pathogens, conditions in soybean crops, their prevalence in the world, competitiveness, symptoms, biological characteristics and ways to limit their development.

Key words: soybean, diseases, downy mildew, powdery mildew, ascochytosis, cercospora leaf spot, septoria leaf spot, alternaria leaf spot, anthracnose, fusarium wilt, sclerotinia leaf spot, protection system.